1.保存溫度和條件

很多抗體的保存條件是分裝成小包裝凍存于 -20 °C 或 -80 °C。分裝能使凍融引起的損失減到zui小，同時可避免多次在一個管內取樣

而由槍頭引入的污染。分裝凍存的抗體，融解一次后剩余抗體應保存于 4 °C。收到抗體后，應 10000g 離心20 秒，使管口螺紋內的抗體溶液全部離心至管底，用低蛋白吸附性的微量離心管分裝。分裝量的多少取決于每次試驗的使用量。分裝量不能少于 10 μl；分裝量越

少，由于蒸發和吸附于管內壁而引起的損失會越大。

除了腹水液含蛋白酶應立即凍存外，大多數抗體接收后可在 4 °C 保存一至兩周，隨后可凍存以長期保存。同樣，應按照說明書推薦的條件進行保存。

2.其他特殊情況

酶聯抗體不應凍存，4 °C 可保證穩定。凍融會降低酶的活性，同時影響抗體的吸附能力。

共軛標記的抗體，無論是標記的熒光染料、酶還是生物素，都應保存于深色的管內并包裹上鋁箔。如果暴露在光線下可能會減弱共軛標記物的活性。熒光標記物尤其容易受到光漂白作用，整個實驗過程中均應避光。

免疫球蛋白 G3 同種型抗體凍融后易形成聚合物，因此應一直保存于 4 °C。

3.用疊氮化防止污染

為防止微生物污染，在抗體溶液中應加入*，終濃度為 0.02%（質量百分比）。

什么時候不能用疊氮化納？

如果用抗體標記活細胞，或用于體內實驗，確保所用制劑中不含*。這種抗生素對大多數有機體都有毒性：會阻斷細胞色素電子傳遞系統的信號。*會干擾胺基的共軛標記，應在進行標記之前將其除去。標記后抗體可保存于疊氮化納，也可用不含胺基的硫柳汞

替代。

*可用透析或凝膠過濾法從抗體溶液中除去。免疫球蛋白 G 的分子量是 150,000 道爾頓（免疫球蛋白M 的分子量是 600,000 道爾頓），*的分子量是 65 道爾頓。使用 14000 道爾頓的微量透析裝置，隨著*的擴散，抗體將保留。將帶有燒杯的磁力攪拌器置于 4 °C 攪拌透析裝置 6 小時,每毫升抗體溶液要用至少 1 升的 PBS。更換 2 次 PBS，每次均攪拌至少 6 小時。如果可以的話，所有材料均要求無菌，所有溶液都應無菌配制。

4.凍存/復蘇的損失

反復凍融可使抗體變性，使其形成聚合物而降低了抗體結合能力。大多數抗體在 -20 °C 保存就足夠了，沒有必要置于 -80 °C 保存。千萬不要使用無霜的冰箱。反復凍融能減少霜的形成，但這正是應該避免的。同理，抗體應該放置于冰箱中溫度變化zui小的部位，如應放置于冰箱格里，而不應放置于冰箱門上。

一些研究者為防止反復凍融的損失，在抗體中加入終濃度為 50% 的甘油作為抗凍劑。甘油可以將冰點降低至-20 °C 以下。

由于-80 °C 低于甘油的冰點，所以加了甘油的溶液不應保存于 -80 °C。注意，甘油可能會被細菌污染。如果要加入甘油或其他防凍劑，應注意無菌處理。稀釋至工作濃度的抗體不要在 4 °C 保存超過一天時間。通常蛋白質在較高濃度保存時不易發生降解，理想濃度為 1 mg/ml或更高，因為抗體溶液中包含了如牛血清白蛋白等蛋白質穩定劑。加入的蛋白可吸附于管壁從而使抗體的損失減到zui小。對用于聚合的抗體，不應加入蛋白穩定劑，因為其可能會與抗體競爭而降低抗體的聚合活性。